- 病原学阴性肺结核诊断治疗及质量控制
- 陈明亭 周林 周新华
- 2520字
- 2021-12-17 22:53:21
三、分枝杆菌分离培养
分枝杆菌分离培养包括固体培养和液体培养方法,用于分离检测分支杆菌。固体培养是我国基层目前使用最多的方法,下述将主要针对简单法固体培养进行描述(图3-8),液体分离培养方法须严格按照厂家说明进行(图3-9)。分枝杆菌分离培养应选择2份痰标本进行分离培养。
(一)操作步骤(简单法)
1.标本前处理和接种
(1)对照标记的患者姓名,在生物安全柜内将约1~2ml标本转移至相应前处理管中,旋紧痰标本容器螺旋盖。
(2)视标本性状,将1~2倍的4%NaOH溶液加入前处理管中,旋紧处理管螺旋盖,立即开始计时15分钟。
(3)在生物安全柜内,将处理管在涡旋振荡器上涡旋振荡30秒直至痰标本充分液化。
(4)将前处理管置于试管架内,置于生物安全柜内,室温静置,直至15分钟计时结束。
(5)拧开罗氏培养管螺旋盖,检查培养基斜面底部的凝固水,如果凝固水过多,则沿着斜面相对的一面的培养管内壁,将凝固水弃去。
(6)用无菌吸管吸取前处理后的痰标本,保持培养基斜面水平,均匀接种至酸性罗氏培养基斜面上,每支培养基接种0.1~0.15ml(约2~3滴),接种时第一滴液体接种至斜面中部,第二滴接种到培养基上部(距离培养基顶端1cm处),旋紧培养管螺旋盖,轻轻转动并放低培养管底部,使接种的液体均匀地在斜面上铺开。
2.孵育
(1)将培养基放置在斜面放置架上,保持培养基斜面水平向上。
(2)连同斜面放置架将培养管置于恒温培养箱内,(36±1)℃孵育。
(3)待24小时后,直立放置培养管,(36±1)℃条件下继续孵育。
3.结果判读
接种后第3日和第7日观察培养情况,此后每周观察一次,直至第8周末。每次观察后要在培养结果记录本上记录观察结果。
(二)操作步骤(液体法)
1.准备培养管
(1)拿出MGIT 7ml生长指示管、生长添加剂、PANTA,检查MGIT生长指示管有无破损及污染(管中液体出现浑浊)。
(2)将MGIT PANTA与15ml MGIT生长添加剂重新混合。
注意:该混合物在2~8℃可稳定保存7天。在保存前贴上标签,包括内容物、配制时间、有效期及配制人信息。若7天内不能用完,可当时分装,置于-20℃以下的温度,保存6个月。
(3)在生长指示管上标记标本编号。
(4)用移液枪在每个MGIT管内添加溶解后的0.8ml PANTA/生长添加剂混合物,注意操作不要污染管,盖紧MGIT管。
2.标本前处理和接种
(1)对照标记的患者姓名,在生物安全柜内将约1~2ml标本转移至相应前处理管中,旋紧痰标本容器螺旋盖。
图3-8 分枝杆菌固体培养试验标准化操作示意图(简单法)
图3-9 分枝杆菌液体培养试验标准化操作示意图
(2)视标本性状,将1~2倍的NALC-NaOH混合溶液加入前处理管中,旋紧处理管螺旋盖,涡旋震荡10~20秒,立即开始计时15分钟。
(3)室温静置15分钟。
(4)加入0.067M的pH为6.8的磷酸盐缓冲液至45毫升。
(5)离心力3 000×g,离心机温度为8~10℃,离心15~20分钟。
(6)在离心期间,按所接种的液体培养基要求,向液体培养基中加入指定量的营养添加剂(如OADC)和抗污染剂(如PANTA)。
(7)离心结束后,将离心筒(杯)取出,在生物安全柜中小心打开离心桶(杯)盖,取出离心管。
(8)小心弃掉离心管内上清液至含消毒剂的废液缸中。
(9)加入1ml磷酸盐缓冲液至离心管中,重悬沉淀。
(10)吸取0.5ml重悬液,接种于液体培养基内。
3.孵育
按照液体培养基的具体要求放置到培养仪器相应的位置进行孵育。
4.结果判读和报告
(1)如果培养仪器报告阳性,应按照液体培养基的具体要求对培养液进行涂片染色显微镜检查。
(2)如果涂片检查为抗酸菌阳性,则报告培养阳性,进行进一步鉴定和药物敏感性试验。
(3)如果难以确定,可用培养液接种血琼脂培养板或巧克力琼脂培养板,如果在24小时内有菌落生长,则判定不是结核分枝杆菌生长。如果涂片检查发现有非抗酸菌存在,则报告污染。如果任何微生物皆未发现,应继续培养。
(4)6周培养仪器未报告阳性,则判定为培养阴性。
(三)操作注意事项
1.培养基质量的确认
观察培养基外观,酸性罗氏培养基绿色略偏蓝,中性罗氏培养基为绿色。如果培养基异常,颜色灰暗,过蓝或过黄,均不能使用。另外培养基质地过软或干涸、匀化性差等均不能使用。每批新制作或新批号的商品化培养基至少要抽取5%进行无菌性测试,有条件时进行敏感性测试。
2.治疗前采集痰标本
抗结核治疗会降低分离培养阳性率,用于分离培养的痰标本尽可能在治疗前采集。
3.分离培养前痰标本保存
若不能在痰标本采集后立即进行分离培养操作,应将痰标本储存于2~8℃冰箱暂时保存,防止痰液干涸或污染。从收集痰标本至处理痰标本的时间至多不能超过7天。
4.痰标本前处理
确保痰标本处理液浓度为4%,处理时间为自加入前处理液开始至结束15分钟内,处理时间过短会造成过高的污染率,如果标本量过大,应分批次处理(如每次处理6~8个痰标本),避免因每批处理标本过多,导致处理时间过长而降低培养的阳性率。
5.接种
如果经过正常的前处理过程后,仍有部分肉眼可见的沉渣或痰栓,接种前不要吹打或混匀,直接吸取上层液体接种,减少污染的发生。
接种处理液时尽量铺满整个培养基斜面。
6.孵育
接种菌液的培养基应水平放置放置24小时,待菌液完全吸收后再直立放置继续孵育。
结核分枝杆菌的最适宜生长温度为37℃左右,温度过高或过低均会造成结核分枝杆菌停止生长,因此要每日监测培养箱的温度,确保温度波动范围为35~37℃之间。
(四)监控质量指标
每月定期汇总分析反映分枝杆菌分离培养工作的质量指标,连续监测各指标,指标值出现明显变化应立即查询原因,并尽快解决。
分枝杆菌分离培养质量指标包括初诊患者培养阳性比例、初诊患者结核分枝杆菌培养阳性比例、涂阳标本培养阳性比例、培养发生污染比例(固体)、培养发生污染比例(液体)、分离培养周转时间(固体)、分离培养周转时间(液体)。
初诊患者培养阳性比例=初诊患者中培养阳性的患者数量/初诊患者中开展培养的总数量
初诊患者结核分枝杆菌培养阳性的比例=初诊患者中分离培养阳性且菌株经鉴定为结核分枝杆菌的患者数量/初诊患者中开展培养的总数量
涂阳标本培养阳性比例=痰涂片镜检阳性且培养阳性的标本数量/痰涂片镜检阳性且开展分离培养的标本数量
培养发生污染比例=分离培养发生污染的培养管(基)数量/开展分离培养的总培养管(基)数量
分离培养周转时间=自实验室接收到标本至实验室报告分离培养结果报告的时间间隔